激光与光电子学进展, 2018, 55 (4): 043003, 网络出版: 2018-09-11   

法莫替丁与牛血清蛋白相互作用的光谱研究 下载: 1640次

Spectroscopic Study on Interaction of Famotidine with Bovine Serum Albumin
作者单位
南京航空航天大学理学院, 江苏 南京 210016
摘要
法莫替丁是组织胺H2受体拮抗剂,具有减弱胃酸生成的作用。通过分析荧光光谱和紫外可见吸收光谱探寻了法莫替丁与牛血清蛋白(BSA)的猝灭作用,并阐明两者间的作用机制。通过分析可知,法莫替丁能有效猝灭BSA的内源荧光,猝灭机制为静态猝灭。测定了法莫替丁与BSA在306 K和314 K下的表观结合常数KA,分别为9.861×10 4,3.891×10 4 L/mol。通过对猝灭过程中的热力学参数进行分析,得出法莫替丁与BSA的作用力主要是氢键和范德瓦耳斯力。凭借F rster非辐射能量转移理论计算得到了法莫替丁和BSA的相互作用距离为1.25 nm,发生了非辐射能量转移。
Abstract
Famotidine is a histamine H2 receptor antagonist, which has a significant inhibitory effect on gastric acid secretion. The quenching effect between famotidine and bovine serum albumin (BSA) is studied with the analysis of fluorescence spectrum and ultraviolet visible absorption spectrum, and the interaction mechanism between them is elucidated. The results show that famotidine has strong quenching effect on the endogenous fluorescence of BSA, and the quenching mechanism is static quenching. The apparent binding constant KA of famotidine and BSA at 306 K and 314 K is determined to be 9.861×10 4 L/mol and 3.891×10 4 L/mol. The calculated thermodynamic parameters show that the interaction between famotidine and BSA is mainly hydrogen bond and van der Waals force. According to the F rster nonradiative energy transfer theory, the interaction distance of famotidine and BSA is calculated to be 1.25 nm, and nonradiative energy transfer occurs.

1 引言

蛋白质是人体内最重要的组成部分,不仅能为人体提供能量,还是生命活动的主要承担者。蛋白质的结构组成是生物科学领域的核心课题之一,人们尝试采用不同的分析方法来解析药物对蛋白质结构功能的影响[1-2]。血清蛋白是蛋白质的一种,能起到结合并搬运许多内源和外源化合物,并将其送至目标部位的重要作用[3-6]。研究血清蛋白与药物小分子的相互作用有助于理解药物传输、分配、生效的机理,也有助于新药的研发[7-9]

牛血清蛋白(BSA)结构稳定,价格低廉,与人血清蛋白(HSA)同源,因此常被用作HSA的替代品,研究药物在人体内的运作[10]

组胺H2受体的发现推动了抑制胃酸和胃液分泌的抗消化道溃疡类药物的研制,西咪替丁、雷尼替丁和法莫替丁等新药都是是受体研究的重要成果[11]。法莫替丁能有效抑制胃酸分泌,可用来治疗胃及十二指肠溃疡、急性胃黏膜出血,以及反流性食道炎等[12-13]。本文结合荧光光谱和紫外吸收光谱研究了法莫替丁与BSA之间的作用类型和作用力,为厘清法莫替丁在人体内的生效机理提供了依据。

2 实验部分

2.1 试剂与仪器

BSA购于南京奥多福尼生物科技有限公司,其纯度大于80%,分子相对质量为66430。称取适量BSA并用含0.05 mol/L NaCl的0.2 mol/L磷酸盐缓冲溶液配制成BSA溶液,备用。实验用水为蒸馏水。

法莫替丁购于上海信谊药厂有限公司,其分子式为C8H15N7O2S3,分子相对质量为337.45。分子结构式如图1所示。称取10 mg法莫替丁溶于甲醇(江苏永丰化学试剂有限公司,纯度不低于99.5%)中,配制成2.96×10-6 mol/L的法莫替丁溶液。

图 1. 法莫替丁的结构式

Fig. 1. Chemical structure of famotidine

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实验采用的仪器有Perkins Elmer LS55荧光分光光度计、上海天美UV3600紫外可见分光光度计、上海江星HH-2数显恒温水浴锅、上海舜宇恒平FA2004电子天平(精度为0.0001)、德国Eppendorf公司微量移液枪(10 μL,100 μL,1000 μL)。

2.2 实验方法

用移液枪取3 mL 5.3×10-7 mol/L的BSA溶液转移到比色皿中,将比色皿水浴加热至32 ℃,然后放入荧光光谱仪中进行扫描;采用波长为285 nm的激发光,激发和发射狭缝宽度为4 nm,扫描速度为300 nm/min。先测量未加药时纯BSA的光谱,接着逐次加入5 μL 2.96×10-6 mol/L的法莫替丁溶液,并逐一测量其光谱。再将水浴锅温度调节至40 ℃,重复以上操作。

为计算结合距离,取5×10-6 mol/L的BSA溶液和法莫替丁溶液,用上海天美UV3600紫外分光光度计测量其在290~450 nm波长范围内的紫外吸收光谱;将LS55荧光光谱仪激发波长设定为285 nm,设定激发和发射狭缝为5 nm,扫描BSA溶液在290~450 nm波长范围内的荧光光谱。

3 结果与讨论

3.1 荧光猝灭光谱

广义上来说,能令荧光强度或相关峰位发生变动的作用过程都可以称为荧光猝灭。荧光猝灭剂是能与荧光物质分子发生相互作用,令荧光强度和相关激发峰位、荧光峰位发生变化的物质[14]

图2为加入不同剂量法莫替丁前后BSA的荧光猝灭光谱,λex为荧光最大激发波长。从1到7,法莫替丁的加入量依次递增,分别为0,5,10,15,20,25,30 μL。由图2可见:体系的荧光强度随着法莫替丁溶液的滴入而减小。实验过程中滴加的试剂对BSA溶液产生了稀释作用,可能会导致荧光强度降低,但由于每次操作只滴加5 μL的法莫替丁溶液,6次滴加的总量也只有30 μL,相对于3 mL的BSA溶液,产生的稀释作用可以忽略不计。此外,只滴加溶剂(甲醇)的对比实验证明了溶剂本身对BSA溶液光谱的影响十分微弱,可以排除甲醇对实验的影响。由此可见,荧光强度的减弱来自于法莫替丁对BSA的荧光猝灭作用。

图 2. 法莫替丁-BSA的荧光猝灭光谱

Fig. 2. Fluorescence quenching spectra of famotidine-BSA system

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3.2 荧光猝灭类型

蛋白质和小分子相互作用的猝灭类型通常分为两类:静态猝灭和动态猝灭[15]。静态猝灭是指荧光分子和猝灭分子在基态通过络合反应生成超分子化合物,从而使荧光基团的发光强度减弱;动态猝灭是指荧光物质的激发态分子与猝灭分子发生碰撞,经电荷或能量转移后返回到基态的过程。

辨别猝灭类型的方法通常是根据温度改变前后猝灭常数的变化趋势。温度上升后,如果发生的是动态猝灭,那么粒子的碰撞将会被加剧,猝灭常数增大;相反,若是静态猝灭,结合物的稳定性会随着温度升高而降低,猝灭常数会降低。因此,猝灭机理可以用温度的变化来辨别[16-20]

猝灭机制可以由Stern-Volmer方程来描述:

F0/F=1+Kq·τ0·Q=1+KSVQ,(1)

式中F0/F为荧光强度比; Q为猝灭剂的浓度;Kq为双分子猝灭过程的速率常数;τ0为未加猝灭剂时荧光分子的平均寿命(对于大多数的生物分子而言,τ0约为10 ns)[21-23];KSV为Stern-Volmer猝灭常数,是双分子猝灭速率常数与单分子衰变速率常数的比率[24]

图3给出了不同温度下,法莫替丁与BSA溶液猝灭作用的Stern-Volmer曲线。通过拟合得到的Stern-Volmer线性方程、相关系数、Stern-Volmer猝灭常数和速率常数列于表1中。

通过分析图3表1可知,荧光强度比F0/F随着猝灭剂法莫替丁浓度 Q的增加而线性上升,说明法莫替丁与BSA的相互作用为单一猝灭类型。生物大分子的最大扩散碰撞猝灭速率常数Kq=2.0×1010 L/(mol·s),法莫替丁与BSA的猝灭常数大于Kq,可以初步判断该过程主要是静态猝灭[25-30]。此外,随着温度上升,Stern-Volmer方程的斜率下降,即猝灭常数KSV下降,说明BSA与猝灭剂形成的复合物随着温度升高而趋向于不稳定,是典型的静态猝灭特征。综上分析可知法莫替丁对BSA的猝灭类型为静态猝灭。

图 3. 法莫替丁与BSA相互作用的Stern-Volmer曲线

Fig. 3. Stern-Volmer plots of BSA interacted by famotidine

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表 1. 法莫替丁-BSA体系的Stern-Volmer方程、猝灭常数及速率常数

Table 1. Stern-Volmer equation, quenching constant and quenching rate constant of famotidine-BSA system

T/KLinear equationof Stern-VolmerCorrelationcoefficientQuenching constantKSV /(104 L·mol-1)Quenching rate constantKq /(L·mol-1·s-1)
306F0/F=1.0128+7.773×104Q0.990237.773×1047.773×1012
314F0/F=1.01207+6.15×104Q0.997546.15×1046.15×1012

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3.3 表观结合常数和结合位点

静态猝灭是指荧光体与猝灭剂结合形成复合物导致荧光减弱的现象。对于静态猝灭,荧光体分子与猝灭剂之间的作用关系常用双对数方程[31]表示:

lgF0-F/F=lgKA+nlgQ,(2)

式中F0F分别为添加法莫替丁前后BSA体系的荧光强度,KA为药物分子与蛋白质生物大分子的表观结合常数,n为结合位点数。当在BSA中逐滴加入猝灭剂法莫替丁后,以lg F0-F/F为纵坐标、lg Q为横坐标可以拟合得到一条直线,如图4所示。

图4可见,不同温度下拟合得到的双对数曲线均保持良好的线性关系。将各个温度的结合位点数n和表观结合常数汇总后可得表2

图 4. 不同温度下lgF0-F/F-lgQ拟合直线

Fig. 4. Fitted lgF0-F/F-lgQ curves at different temperatures

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表 2. 法莫替丁-BSA体系的表观结合常数与结合位点数

Table 2. Apparent binding constant and number of binding sites of famotidine-BSA system

T/KLinear equationCorrelationcoefficient R2Number ofbinding sites nApparent binding constantKA /(L·mol-1)
306lgF0-F/F=4.99392+1.01904 lgQ0.995441.019049.861×104
314lgF0-F/F=4.59005+0.95886 lgQ0.999260.958863.891×104

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表2可以看出:在306 K和304 K下,法莫替丁与BSA的结合位点数n分别为1.01904和0.95886,均约为1,即一个BSA大分子上有一个结合位点,该结合位点可与一个法莫替丁分子结合;不同温度下的表观结合常数均达到104数量级,说明法莫替丁与BSA的结合能力很强;表观结合常数随着温度的升高而降低,符合静态猝灭的特征。

3.4 作用力类型的确定

药物与大分子之间的相互作用类型包括氢键、范德瓦耳斯力、静电引力和疏水作用力等。根据Ross等的研究结果可知[32],通过反应前后的焓变ΔH和熵变ΔS可以判断药物与蛋白质分子之间的主要作用类型。当ΔH>0、ΔS>0时,主要作用力为疏水作用力;当ΔH<0、ΔS<0时,主要作用力为氢键和范德瓦耳斯力;当ΔH<0、ΔS>0时,主要作用力为静电引力[33]。当温度变化不大时,这些数据可以用下列公式求出:

ΔG=-R·T·lnKA,(3)lnK2/K1=ΔH/R·1/T1-1/T2,(4)ΔG=ΔH-T·ΔS,(5)

式中R为理想气体常数,ΔG为吉布斯自由能变,T为热力学温度。把体系中的表观结合常数对应着各自的温度代入(3)~(5)式中,即可得到各温度下对应的ΔH、ΔG、ΔS,见表3

表 3. 热力学参数表

Table 3. Thermodynamic parameter table

T/KKA /(L·mol-1)ΔH /(kJ·mol-1)ΔG /(kJ·mol-1)ΔS /(J·mol-1·K-1)
3069.861×104-93.149-29.254-208.78
3143.891×104-93.149-27.591-208.78

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表3中可以看出:在法莫替丁与BSA作用过程中,ΔG<0,说明该作用过程是一个熵增加、吉布斯自由能降低的自发过程;ΔH<0和ΔS<0说明法莫替丁与BSA之间的主要相互作用为氢键和范德瓦耳斯力。

3.5 能量转移及作用距离

根据Föster提出的非辐射能量转移机理(FRET)可知,当满足供能体可以发出荧光,供能体的荧光光谱与受能体的吸收光谱有足够的重叠部分,且供能体和受能体的最大距离不超过7 nm的条件时,将发生非辐射能量转移[34]

能量转移效率E的表达式为

E=1-F/F0=R06/R06-r6,(6)R06=8.8×10-25JK2Φn1-4,(7)

式中:r为供能体与受能体之间的距离;R0为转移效率为50%时的临界能量转移距离;n1为折射率,取法莫替丁的折射率为1.33;K2为偶极-偶极相互的定向因子,取受能体和供能体的各向随机分布平均值的2/3;Ф为荧光量子产率,通常取0.15;J为供能体的荧光发射光谱和受能体的吸收光谱的重叠积分[35-38]J的表达式为

J=F(λ)ε(λ)λ4ΔλF(λ)Δλ,(8)

图 5. BSA的荧光发射光谱和法莫替丁的紫外吸收光谱

Fig. 5. Fluorescence emission spectrum of BSA and ultraviolet absorption spectrum of famotidine

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式中λ为测量荧光强度和吸光度时对应的测量光的波长,F(λ)为供能体荧光发射光谱的荧光强度,ε(λ)为用受能体的紫外吸收光谱测得的摩尔吸光系数[39]。在测BSA的荧光发射光谱和法莫替丁的紫外吸收光谱时,要保证两者溶液的物质的量浓度相等。

图5可以计算得到供能体的荧光发射光谱和受能体的吸收光谱的重叠积分J=3.56×10-15 cm3·L·mol-1。将结果代入(6)~(7)式可以计算出临界转移距离R0=2.15 nm,法莫替丁与蛋白质相互作用距离r=1.25 nm。r不仅小于7 nm,还满足0.5R0<r<1.5R0这一条件,可以判断发生了非辐射能量转移[40]

4 结论

采用荧光光谱分析法对法莫替丁-BSA系统的相互作用机制、作用力类型进行了定性分析。根据研究结果可知:法莫替丁对BSA的荧光淬灭类型为静态猝灭,两者之间的作用力主要是氢键和范德瓦耳斯力;依据双对数模型定量计算出结合位点数和不同温度下的表观结合常数KA,根据Förster非辐射能量转移理论可计算出法莫替丁与BSA的相互作用距离为1.25 nm。

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