郭淑军 1,2,3,4,5,*刘伟 1,2,3,4,5金媛 1,2,3,4,5王强 1,2,3,4,5[ ... ]陈小佳 1,2,3,4,5
作者单位
摘要
1 暨南大学生物医药研究院, 广东 广州 510632
2 暨南大学细胞生物学系, 广东 广州 510632
3 基因工程药物国家工程研究中心, 广东 广州 510632
4 广东省生物工程药物重点实验室, 广东 广州 510632
5 广东省生物技术药物工程技术研究中心, 广东 广州 510632
目的: 以小鼠为模型, 建立一种基于流式细胞仪为检测手段的快速分离脂肪来源干细胞的方法, 解决间充质干细胞进入实际应用过程中遇到的难题。方法: 取BALB/c小鼠腹股沟内侧的皮下脂肪组织, 采用Ⅰ型胶原酶消化等系列措施, 获取脂肪干细胞(adipose-derived stem cells, ADSCs)。所得细胞分离培养4代后, 流式细胞仪分选出CD73+CD45- ADSCs后成骨诱导分化。碱性磷酸酶染色和实时荧光定量PCR检测其分化情况。结果: 刚分离培养的ADSCs细胞普遍呈圆形或椭圆形, 传至第三代的细胞, 非MSCs细胞逐渐被淘汰, 剩余的细胞形态逐渐变得一致, 细胞形态呈梭形。流式细胞仪检测发现ADSCs细胞表面抗原标记CD73+CD45- 为20.7%。所得的ADSCs成骨诱导分化后碱性磷酸酶(alkaline phosphatase, ALP)染色呈阳性, 实时荧光定量PCR检测成骨标志基因发现它们表达上调, 其中ALP的表达高达22倍。结论: 本方法可以获得纯度较高的ADSCs, 且耗时少成本低; 且提示可采用该方法来获得大量的人源ADSCs用于组织工程修复。
脂肪 间充质干细胞 分离 adipose mesenchymal stem cells isolation 
激光生物学报
2017, 26(1): 91
作者单位
摘要
暨南大学生物医药研究院, 暨南大学细胞生物学系, 基因工程药物国家工程研究中心, 广东省生物工程药物重点实验室, 广东 广州 510632
目的: 通过分选肺腺癌A549细胞的侧群细胞(side population cells, SP), 了解影响Influx分选SP的各种因素, 为成功分选其他肿瘤细胞的SP亚群提供方法参考。方法: (1)细胞的制备: 取对数生长期的细胞, 制备单细胞悬液, 用Hoechst33342及PI标记染色, 同时设计维拉帕米对照组; (2)最佳分选喷嘴的确定: 根据对数生长期的A549细胞处于不同的分裂时象的细胞大小, 预实验确定最佳分选喷嘴; (3)光信号的调试: 用Rainbow Beads优化670/30[355]、460/50[355]荧光信号和FSC散射光信号, 使光信号最强且变异系数(coefficient of variation, CV)最小。(4)最佳液滴延迟的确定: 调节振荡频率(frequency)找出最佳液流断点位置, 调节振幅(ampitude)优化侧液流信号直到两侧液流信号最稳定, Delay Calculator自动计算液滴延迟, 根据Accudrop Beads的分选效果确定最佳液滴延迟; (5)其他指标的调整: 调节液滴的充电电压(drop charge)和分选装置的X、Y轴坐标, 使测试分选液滴准确达到分选装置中; 设置分选参数, 分选目的细胞群。结果: 同一批次处理的A549肺腺癌细胞, 100 μm的喷嘴为分选A549肺腺癌SP亚群的最佳喷嘴; CV值校正后SP比例为19.7%, 提高了6%; 液滴延迟校正后, 其分选效率(efficiency)提高了15%, 分选纯度(purity)提高了23%; 10 μg/mL的Hoechst33342染色, 其SP比例是5 μg/mL染色的5倍以上; 细胞浓度越稀, 分选效率和分选纯度相应提高; 活细胞比例越高, SP比例越高。结论: 合适的喷嘴大小, 是保证高分选效率和高分选纯度的基础; 仪器较小的CV值和较精确的液滴延迟、合理的Hoechst33342染料浓度、较高的细胞存活率和适中的细胞浓度是保证高分选效率和高分选纯度的的关键; 通过平衡上述影响分选的因素才可能得到最佳的分选效果。
流式分选 侧群干细胞 变异系数 效率 纯度 FACS sorting side population cells efficiency purity coefficient of variation 
激光生物学报
2013, 22(5): 423

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