宋晓康 1,2赵强 1,3,*张元志 2王贻坤 2[ ... ]朱灵 2,**
作者单位
摘要
1 安徽建筑大学环境与能源工程学院,安徽 合肥 230601
2 中国科学院合肥物质科学研究院安徽光学精密机械研究所,安徽 合肥 230031
3 环境污染控制与废弃物资源化利用安徽省重点实验室,安徽 合肥 230601
将三维荧光光谱技术与平行因子分析法相结合,实现了细胞培养基样本中色氨酸(TRY)、还原烟碱腺嘌呤二核苷酸(NADH)、黄素腺嘌呤二核苷酸(FAD)和维生素B6(VB6)含量的定性和定量分析。首先制备了25个细胞培养基样本,使用六因素五水平正交试验确定每个样本中四类荧光组分的混合方式和浓度梯度;采用荧光分光光度计扫描各样本的激发-发射矩阵,依次进行波长差异性校准、水拉曼和瑞利散射去除、内滤效应校正、光强标准化以及高杠杆点去除等预处理,然后采用水拉曼谱峰面积作为光强的当量单位,将荧光光强进行标准化;采用核一致矩阵确定模型的最佳组分数为4,最后使用平行因子分析法对三维荧光光谱数据集进行三线性分解,得到上述种荧光团的平均回收率分别为100.2%±15.5%、107.4%±37.1%、100.5%±6.4%、99.5%±6.5%,预测均方根误差(RMSEP)分别为0.124、43.312、1.601、0.639 μg/mL,相对平均偏差分别为13.216%、36.937%、6.112%、6.331%,检测限分别为0.013、52.628、0.003、0.012 μg/mL。TRY的发射光谱与NADH的激发光谱重合,且FAD的激发光谱与NADH的发射光谱重合,因此出现了荧光共振转移现象,该现象导致模型对NADH浓度的预测能力低于对其他三种荧光团的预测能力。模型在各荧光团的定性分析方面表现良好,均通过了S4C6T3的拆半分析校验。实验结果表明,三维荧光光谱结合平行因子分析法能够快速测定细胞培养基中多种代谢类荧光组分的含量,在细胞能量和物质代谢检测方面具有广阔的应用前景。
光谱学 三维荧光光谱 平行因子分析 代谢类荧光团 正交试验设计 内滤校正 拆半分析 
中国激光
2022, 49(9): 0911001
作者单位
摘要
1 西安电子科技大学 物理与光电工程学院,西安 710071
2 中国科学院光谱成像技术重点实验室,西安 710119
3 清华大学 物理系 低维量子物理国家重点实验室,北京 100084
4 深圳大学 物理与光电工程学院 光电子器件与系统实验室,广东 深圳 518060
癌症是目前人类所面对的共同难题,降低癌症死亡率的关键是实现早期诊断。荧光寿命因对微环境的敏感性,不仅可以实现对早期癌症组织与正常组织的区分,还可以对药物治疗癌症进行监测,因此荧光寿命成像显微技术在癌症诊断方面具有巨大的应用潜力。本文介绍了荧光寿命成像显微技术的基本原理及检测方法,总结了内源性和外源性荧光团的特征及其与癌症诊断的关系,综述了近年来荧光寿命成像显微技术在神经系统、呼吸系统、消化系统、生殖系统、泌尿系统、内分泌系统以及皮肤系统等癌症诊断中的应用,讨论了荧光寿命成像显微技术在癌症诊断中的应用优势、局限性以及未来发展趋势。
荧光寿命 荧光寿命成像 癌症诊断 内源性荧光团 外源性荧光团 Fluorescence lifetime Fluorescence lifetime imaging Cancer diagnosis Endogenous fluorophores Exogenous fluorophores 
光子学报
2021, 50(10): 1017001
作者单位
摘要
1 汕头大学医学院 a.中心实验室
2 汕头大学医学院 b.第一附属医院, 汕头 515041
研究不同分化的食管癌细胞Cx43蛋白的表达和空间定位及其对食管癌细胞的生物学行为的影响。应用合适的荧光探针和激光扫描共聚焦显微镜, 通过单粒子跟踪图像分析, 检测Cx43蛋白荧光团在食管癌细胞中的表达和分布。Cx43在高分化食管鳞癌EC9706中的分布与EC109细胞相似, 特别是细胞膜呈现明显的荧光团; 近细胞膜Cx43蛋白含量相对细胞质增高, 具有在细胞膜构建细胞通信的结构基础, 预示着细胞向良性发展的趋势。低分化食管鳞癌KY150细胞和食管癌SHEEC细胞中Cx43蛋白的荧光团主要分布在近核膜的细胞质中, 较少分布在细胞膜附近;近核膜的Cx43蛋白含量比近细胞膜的含量高, 说明Cx43蛋白在细胞质中的滞留状态。研究显示SPT图像可以直观地示踪Cx43蛋白荧光团在食管癌细胞中的分布, 从而确定Cx43蛋白在不同分化的食管癌细胞中表达及定位的痕迹。
食管癌 连接蛋白43 激光扫描共聚焦显微镜 荧光图像 单粒子跟踪 荧光团 esophagus cancer connexin43(Cx43) confocal laser scanning microscope fluorescence image single particle tracking fluorophores 
激光生物学报
2019, 28(5): 439
Author Affiliations
Abstract
1 Physical Biochemistry Lab, INBI RAS, Leninsky Prospekt 33, Build. 2 Moscow 119071, Russia
2 Faculty of Bioengineering and Bioinformatics Moscow State University Leninskiye Gory 1-73, MSU GSP-1 Moscow 119991, Russia
3 Confocal Bio-Imaging Facility (CBIF), Division Deputy Vice-Chancellor (Research & Development) University of Western Sydney, Locked Bag 1797 Penrith South DC, NSW 1797, Australia
4 Institute of Higher Nervous Activity and Neurophysiology The Russian Academy of Sciences 5A, Butlerova St., Moscow 117485, Russia
5 Skobeltsyn Institute of Nuclear Physics, Moscow State University 1(2) Leninskie Gory GSP-1, Moscow 119991, Russia
6 Molecular Microbiology Lab, Skryabin Institute of Biochemistry and Physiology of Micro-organisms RAS Prospect Nauki 5 Pushchino, 142290 Moscow Region, Russia
7 Group of Bioengineering of Reporter Proteins Branch of the Shemyakin-Ovchinnikov Institute of Bioorganic Chemistry of the Russian Academy of Sciences Prospekt Nauki 6 5 Pushchino, 142290 Moscow Region, Russia
8 Institute of Laser and Information Technologies RAS 2 Pionerskaya, Troitsk, Moscow 142190, Russia
A group of variously colored proteins belonging to the green fluorescent protein (GFP) family are responsible for coloring coral tissues. Corals of the Great Barrier Reef were studied with the custom-built fiber laser fluorescence spectrometers. Spectral analysis showed that most of the examined corals contained multiple fluorescent peaks ranging from 470 to 620 nm. This observation was attributed to the presence of multiple genes of GFP-like proteins in a single coral, as well as by the photo-induced post-translational modifications of certain GFP-like proteins. We isolated a novel photo-convertible fluorescent protein (FP) from one of the tested corals. We propose that two processes may explain the observed diversity of the fluorescent spectra in corals: (1) dark post-translational modification (maturation), and (2) color photo-conversion of certain maturated proteins in response to sunlight.
Coral fluorescence GFP-like proteins fluorophores Kaede 
Journal of Innovative Optical Health Sciences
2015, 8(4): 1550028
作者单位
摘要
1 电力设备电气绝缘国家重点实验室, 西安交通大学电气工程学院, 陕西 西安 710049
2 生物医学信息工程教育部重点实验室, 西安交通大学生命科学与技术学院, 陕西 西安 710049
测量并研究了家兔心脏组织自体荧光的三维光谱和发射光谱。 果表明: 冰冻前后心室和心房组织的三维荧光光谱差异较主动脉明显, 说明冰冻后其NADH和黄素的含量改变。 心房、 心室和主动脉组织在340 nm激发光下的自体荧光光谱具有特定的差异, 其主要荧光峰位于460 nm 的NADH, 以及290~400 nm之间的胶原蛋白和弹性蛋白。 根据心房和心室组织的高斯拟和光谱发现, 光谱的峰位、 相对荧光强度和半宽等参数各不相同。 由此, 可以根据荧光光谱的谱形和峰强比可以显著区分出不同的心脏组织类型。 此外, 研究首次发现心室组织NADH的荧光强度会随心肌死亡时间增加而衰减, 可作为死亡时间确定的新方法。
自体荧光 荧光光谱 内源性荧光物质 心脏 Autofluorescence Fluorescence spectrum Endogenous fluorophores Heart 
光谱学与光谱分析
2009, 29(6): 1651

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